Questões de Técnicas em Laboratório para Concurso

Algumas cepas de enterococos podem dar falsa reação negativa na prova da catalase.

O Teste da DNAse consiste na inoculação de colônias em meio contendo DNA, (DNAse test agar). Após a incubação, uma coloração rósea característica ao redor das colônias produtoras de DNAse indica a positividade da prova.

Na prova da catalase, ao coletar a colônia, não carregar meio de cultura (ágar sangue), que pode acarretar resultados falso-negativos porque o sangue do meio contém catalase.

No teste do crescimento em ágar manitol, avalia-se a capacidade de fermentar o manitol em meio contendo 7,5 % de cloreto de sódio. O indicador de pH é o vermelho de fenol, que indica uma reação positiva quando o meio ao redor das colônias permanece avermelhado, e negativa, quando se torna amarelo.

No teste da bacitracina é importante notar que as identificações devem ser feitas em ágar sangue com tensão de CO₂ ou os resultados podem ser conflitantes.

Faust • Lutz • na centrifugação • sulfato de zinco

Baermann-Moraes • Hoffman • na mistura • sulfato de zinco

Hoffman, Pons e Janer • sedimentação espontânea • na mistura • água

Hoffman, Pons e Janer • Lutz • na centrífugo-flutuação • água filtrada

Faust • sedimentação • no aquecimento • água

Laxantes não são contraindicados para a realização do exame.

O frasco fornecido pelo Laboratório destina-se ao transporte da amostra, o qual contém um líquido que deve ser desprezado.

Se observar a presença de sangue, muco ou pus, estes não deverão ser incluídos na amostra para análise.

Coletar as fezes durante 2 dias seguidos e levar a amostra ao Laboratório em até 48 horas.

A amostra pode ser obtida de qualquer evacuação e não precisa ser armazenada em geladeira. Coletar durante 3 dias, de preferência alternados.

O VCM (volume corpuscular médio) avalia o tamanho médio dos eritrócitos e a variação de tamanho dos eritrócitos é indicada pelo RDW (red blood cel distribution width).

Hemoglobina é a razão do volume da massa eritroide sobre o volume do sangue total. Diminuições falsas podem ocorrer na hiperlipemia e na hiperglicemia.

A autoaglutinação de eritrócitos pode provocar falsas elevações na contagem de eritrócitos, enquanto contagens muito elevadas de leucócitos podem provocar diminuições espúrias.

A presença de grande número de eritrócitos nucleados e macroplaquetas podem levar a uma falsa diminuição na contagem de leucócitos.

Os contadores de células calculam o hematócrito de acordo com o RDW e o volume de sangue total.

V • V • F • V • F

V • F • V • V • V

F • V • V • V • V

F • V • V • F • V

F • F • V • V • F

Não reduzem nitrato a nitrito, mas fermentam a glicose com ou sem produção de gás.

Não crescem em meios básicos (caldo peptona) e meios seletivos (Mac Conkey, EMB - Eosin Methylene Blue Agar).

São bacilos esporulados, com motilidade variável, oxidase e catalase positivos.

São anaeróbios facultativos (crescem em aerobiose e anaerobiose), mas não fermentam a glicose.

O Meio IAL (Instituto Adolfo Lutz) foi elaborado para triagem de enterobactérias e consiste de 9 provas em apenas um tubo de ensaio: indol (tampa), fermentação da sacarose e glicose e produção de gás, fenilalanina, ureia, H2S, lisina e motilidade.

Não são analitos que podem sofrer interferência pela hemólise: glicose, albumina e sódio.

Podem ocorrer contagens falsamente baixas de plaquetas, devido a coagulação parcial da amostra, à agregação ou ao satelitismo plaquetário.

A lipemia pode interferir nos exames em que o princípio metodológico é a turbidimetria, podendo produzir resultados falsamente baixos.

A presença de agregados de plaquetas pode levar a uma falsa diminuição na contagem de leucócitos.

A má conservação da amostra ou a presença de agregação leucocitária por anticorpos pode resultar em uma contagem falsamente alta de leucócitos.

O Método de Hoffman, Pons e Janer é um método que detecta larvas vivas, através de hidrotropismo e termotropismo positivo.

O Método de Faust consiste na centrífugo-flutuação em sulfato de zinco.

O Método de Baermann-Moraes não deve ser utilizado para detectar larvas de Strongyloides stercoralis.

A coleta de 3 amostras de fezes para exame parasitológico é sugerida quando o quadro de diarreia é superior a 7 dias em pacientes imunocompetentes.

A cultura de fezes realizada de rotina não prevê testes para Shigella, Salmonella e Campylobacter.

São corretas apenas as afirmativas 1, 2 e 3.

São corretas apenas as afirmativas 1, 2 e 4.

São corretas apenas as afirmativas 1, 4 e 5.

São corretas apenas as afirmativas 2, 3 e 4.

São corretas apenas as afirmativas 3, 4 e 5.

A técnica mais utilizada para semeadura em placa é a técnica de esgotamento, cujo objetivo é o agrupamento de colônias.

Na semeadura, a amostra estriada sobre toda a superfície do ágar em placa dificulta a contagem de colônias.

As placas de meio de cultura semeadas devem ser incubadas por 12 horas em estufa bacteriológica, e se não houver crescimento visível de colônias bacterianas, a incubação pode ser prolongada por apenas mais 24 horas.

A semeadura de quantidade conhecida da amostra com alça calibrada permite fazer a quantificação das bactérias no material.

A observação das características da colônia que se desenvolveu na placa dificilmente permite a identificação do grupo bacteriano.

O exame “a fresco” não permite avaliar a presença de estruturas microbianas com características peculiares e que, em geral, apresentam tamanho suficiente para serem visualizadas sem coloração.

A maioria das estruturas bacterianas é de fácil visualização e diferenciação no exame “a fresco”, não precisando ser submetida a processo de coloração.

No exame direto após coloração, os problemas de interpretação geralmente resultam de má preparação do esfregaço: finos ou espessos, de aquecimento da lâmina e descoloração inadequada.

Materiais obtidos de pacientes sob terapia antibiótica e/ou de culturas velhas não causam alteração da morfologia do organismo.

A observação direta do material não permite determinar a qualidade da amostra e realizar o diagnóstico presuntivo do agente etiológico.

Amostras de fezes coletadas em frasco, que não o fornecido pelo laboratório, não devem ser rejeitadas.

Amostras para cultura de anaeróbios de material de expectoração e lavado brônquico devem ser rejeitadas.

A proporção sangue/aditivo impróprio e a presença de microcoágulos não são critérios para a rejeição de amostras de sangue.

Não há sequência recomendada quanto aos tipos de tubos na coleta (venopunção), uma vez que não há riscos de contaminação das amostras com aditivos do interior dos tubos.

Urina por jato médio, não refrigerada nas primeiras 2 horas após a coleta, não deve ser rejeitada nos casos de solicitação de cultura para a pesquisa de anaeróbios.

materiais dielétricas apresentam condutividade que obedece a Lei de Ohm em intervalos de temperatura mais elevado.

um dielétrico é um material isolante elétrico que, sob a atuação de um campo elétrico exterior acima do limite de sua rigidez dielétrica, permite o fluxo da corrente elétrica.

são materiais sólidos, geralmente cristalinos, que apresenta um band gap de até 4,0 eV.

a fronteira entre a banda de valência e banda de condução em um material dielétrico é bastante tênue, assim, com o aumento de temperatura, é possível observar a promoção de cargas elétricas de uma banda para outra.

materiais dielétricas podem ser sólidos moleculares, cujas moléculas que constituem o material são incapazes de exibir polarização quando submetidas a um campo elétrico externo.

Uso de equipamentos de proteção individual (EPI´s) como luvas, gorros e máscaras que devem ser fornecidos pelo estabelecimento, garantindo a segurança tanto do paciente quanto do colaborador.

A limpeza das bancadas é um procedimento básico de qualquer serviço de saúde, incluindo os laboratórios de análises clínicas. Por tratar-se de procedimento simples e de fácil execução, não há a necessidade de ser descrito em Procedimento Operacional Padrão (POP).

O álcool 70% é concentração mais adequada para realização de assepsia de bancadas e das mãos.

Todas as amostras biológicas devem ser tratadas como potencialmente infectantes em laboratório de análises clínicas.

A semeadura de material para cultura deve ser realizada em capela de fluxo.

I – IV.

I.

III – IV.

I – II – III.

II – III – IV.

hemoglobina.

esterase leucocitária.

glicose.

protozoários.

plaquetas.

Proveta: ideal para armazenamento de soluções por possuir sistema de tampa com vedação adequado.

Balão volumétrico: utilizado para medir volumes diversos com baixa precisão.

Béquer: ideal para realizar medições volumétricas com precisão.

Pipeta volumétrica: utilizada para medição e transferência de grandes volumes sem oferecer precisão.

Erlenmeyer: ideal para armazenar, aquecer e misturar produtos, podendo, também, ser utilizado em preparo de meios de cultura. Juntamente com a bureta é largamente utilizado em titulações

EDTA (ácido etilenodiamino tetra-acético).

Heparina.

fluoreto de sódio.

citrato de sódio.

cloreto de sódio.

É marcador de replicação viral. Sua positividade indica alta infecciosidade.

É o único anticorpo que confere imunidade ao HBV. Está presente no soro após o desaparecimento do HBsAg, sendo indicador de cura e imunidade. Está presente isoladamente em pessoas vacinadas.

Surge após o desaparecimento do HBeAg, indica o fim da fase replicativa.

É marcador de longa duração, presente nas infecções agudas e crônicas. Representa contato prévio com o vírus.

É o primeiro marcador que aparece no curso da infecção pelo HBV. Na hepatite aguda, ele declina a níveis indetectáveis em até 24 semanas.

3 a 5ml por frasco (conforme instruções do fabricante), de uma a duas amostras, coletadas com o intervalo de ao menos 4 horas entre elas.

3 a 5ml por frasco (conforme instruções do fabricante), de uma a duas amostras, coletadas com o intervalo de ao menos 8 horas entre elas.

5 a 10ml por frasco (conforme instruções do fabricante), de duas a três amostras, coletadas com o intervalo de ao menos 12 horas entre elas.

5 a 10ml por frasco (conforme instruções do fabricante), de duas a três amostras, coletadas com o intervalo de ao menos um dia entre elas.

5 a 10ml por frasco (conforme instruções do fabricante), de três a quatro amostras, coletadas com o intervalo de ao menos dois dias entre elas.