Questões de Concurso Público Prefeitura de Dores de Guanhães - MG 2022 para Técnico em Patologia

A conversão de unidades de medidas é extremamente importante para ajustar medidas de volume ou de massa às necessidades das técnicas laboratoriais. Essa ação garante maior acurácia na execução dos ensaios laboratoriais e facilita a rotina do técnico executor do procedimento.
Fonte: ALVARENGA, Felipe Queiroz. Diluição de amostras, jun. 2022.

Para o preparo de uma determinada solução para uso laboratorial, são utilizados 0,3 ml de reagente A; 0,05 ml de reagente B e 0,5 ml de reagente C. Considerando esses volumes muito pequenos para medi-los em vidrarias, o técnico optou por pipetar tais reagentes utilizando pipetas de volume fixo com unidade de medida em microlitros. Para a CORRETA pipetagem dos reagentes A, B e C, são necessárias pipetas de volume fixo de quantos microlitros, respectivamente? 

As vidrarias utilizadas no laboratório têm finalidades diversas, algumas são produzidas para medir volumes, outras para a quantificação de massas de compostos químicos, preparo de soluções, reagente e todas importantes para a obtenção de procedimentos técnicos de qualidade ajustadas cada uma à sua finalidade de utilização. Abaixo estão enumeradas de I a V algumas vidrarias de laboratório. Observe-as. 

Os nomes das vidrarias são:

Alguns reagentes utilizados nos laboratórios de análises clínicas, denominados corantes, são empregados para coloração de amostras biológicas impregnadas em lâmina microscópica para posterior análise do bioquímico, farmacêutico ou biomédico. Essa prática permite a análise de variados tipos de amostras, graças à finalidade para a qual cada um dos corantes foi desenvolvido.
Sobre a utilização de corantes laboratoriais para a realização de exames laboratoriais, considere as afirmativas a seguir:

I - A coloração do esfregaço sanguíneo para realização da contagem diferencial dos leucócitos e análise da morfologia das hemácias pode ser feita com um kit rápido de coloração denominado panótico. II - O kit para realização da coloração de Ziehl Neelsen é aplicado usualmente na pesquisa do bacilo álcool-ácido resistente (BAAR), em amostra de escarro. III - O kit para coloração de GRAM é empregado em diversos materiais biológicos, como secreções, urina, fezes e escarro, e sua finalidade é classificar as bactérias em gram positivas (cor rosa) e gram negativas (cor roxa).

Está CORRETO o que se afirma apenas em: 

O exame de urina é comumente realizado na rotina laboratorial. Além de fácil execução, fornece parâmetros muito importantes para a avaliação do estado de saúde do sistema urinário dos pacientes. Durante a realização do exame físico-químico da urina, há alterações que podem sugerir modificações distintas, importante para o diagnóstico de patologias.

Fonte: ALVARENGA, Felipe Queiroz. Exame de urina rotina. 2022

Considere os dados laboratoriais dos pacientes A e B referentes a um resultado de exame físico-químico de urina a seguir. 






Considere os resultados dos exames físicos e químicos da urina dos pacientes A e B para analisar as afirmativas a seguir.


I - O resultado de urinálise do paciente A exibe alterações características que podem levar à suspeita de infecção do trato urinário, devido à identificação química dos leucócitos. II - O resultado de urinálise do paciente B exibe alterações características de uma hematúria maciça, visível a olho nu e confirmada pela presença da hemoglobinúria. III - O aspecto turvo da urina pode ser devido à presença de elementos anormais na urina, como por exemplo, leucócitos no paciente A e hemácias no paciente B.


Está(ão) CORRETA(S) a(s) afirmativa(s) descrita(s) em:

Leia os trechos a seguir, extraídos de procedimentos operacionais padrão dos métodos de análise parasitológicos, para responder a essa questão.


I - Preparar uma suspensão de 1 parte de fezes, para aproximadamente 10 partes de água; filtrar para um cálice de sedimentação, usando gaze dobrada 4 vezes; acrescentar mais água até que o nível líquido fique a aproximadamente 2 cm da borda do cálice; deixar sedimentar, no mínimo, por 2 horas; e executar a leitura do sedimento entre lâmina e lamínula. II - Colocar cerca de 3g a 4g de fezes no centro de um quadrilátero de gaze, previamente dobrada 4 vezes; unir as pontas da gaze em diagonal e fixar o conjunto na borda de um cálice de sedimentação com o auxílio de um "clips" para papel; colocar água à temperatura de 40 a 42 graus centígrados pelas paredes do cálice, de forma que as fezes fiquem parcialmente submersas; deixar em repouso por 1 hora; retirar, com uma pipeta, uma amostra do líquido do fundo do cálice; e examiná-la. III - Preparar uma suspensão de fezes em solução saturada de cloreto de sódio na proporção de 1:10; filtrar, em gaze dobrada 4 vezes, para um tubo de Wassermann, até bem próximo da borda; com uma pipeta ou contagotas, acrescentar mais solução até a formação de um menisco positivo; colocar uma lamínula sobre o tubo, de forma que entre em contato com o líquido; deixar em repouso por 5 a 10 minutos; transferir a lamínula para uma lâmina com uma gota de lugol; e examinar.

Fonte: MACEDO, H. W. Exame parasitológico de fezes. Universidade Federal Fluminense. Niterói – RJ, 2010. Disponível em: https://www.professores.uff.br/yaraadami/wp-content/uploads/sites/155/2017/10/ApostEPF2010_R1.pdf. Acesso em: 16 jun. 2022.

Os métodos parasitológicos em I, II e III correspondem, respectivamente, ao